На этой странице опубликованы некоторые статьи из бюллетеней РОИ, посвящённые биологииириса: экологическим, анатомическим, морфологическим, биохимическим особенностям.

Болезни ирисов:
Вирозы ириса (М. Черноусов)
Опасный враг ирисов (Н. Горохова, Л. Миронова)
Из личного опыта (И. Лукашин)
Болезни бородатых ирисов (Е. Сытов, Г. Першина, И. Васильева, Л. Трейвас)
Удивительное рядом (И. Лукашин)

Семенное размножение
Изучение фертильности IB* ирисов, 2004 (М. Смит)
О посеве и ином

Вегетативное размножение:
О сроках посадки бородатых ирисов (В. Резепов)
Удивительное рядом (И. Лукашин)
Из своего опыта (В. Шолупов)

Зимостойкость:
Уроки последних лет (Ю. Пирогов)
Удивительное рядом (И. Лукашин)

I. pseudacorus:
О таксономической структуре Iris pseudacorus s. I. (Iridaceae) (Г. Родионенко)

Вирозы ириса

Михаил Черноусов (Воронежская область)

    Проблема вирусных болезней (или вирозов) культивируемых растений была и остаётся одной из самых актуальных в растениеводстве. И ирисы, в этом плане, занимают далеко не последнее место. А настоящее положение дел российского ирисоводства таково, что уже можно констатировать наличие тенденций, могущих привести к вырождению этой культуры. И без принятия радикальных мер сегодня уже в ближайшее время придётся столкнуться с катастрофическими последствиями.
    Если основной массе бактериальных и грибковых болезней можно хоть как-то противостоять всевозможными биологическими и химическими средствами защиты растений, то вирусные болезни не поддаются лечению вообще. И единственная надежда здесь – соблюдение всех защитно-профилактических мероприятий, направленных не только на раннее выявление и уничтожение заболевших растений, но и на недопущение искусственного перезаражения посадочного материала.
    Вирусы (от лат. virus – яд) – ультрамикроскопические паразитические формы жизни неклеточного строения. Как возбудители болезней растений они стали известны с конца XIX века. Но рассмотреть и изучить строение этих невидимых существ, которые на протяжении нескольких столетий подряд служат причиной вырождения сортов и сеянцев культурных растений, стало возможным только к середине прошлого века, с появлением электронных микроскопов.
    Вирусы состоят всего из одной нуклеиновой кислоты (ДНК или РНК) и белковой оболочки. Размножаются они только в клетке растений или вирусоносителей. Попадая в неё, нуклеиновая кислота вируса парализует деятельность клеточной нуклеиновой кислоты хозяина и начинает сама управлять обменом веществ в клетке. В результате такого вмешательства поражённые клетки начинают усиленно синтезировать ВИРИОНЫ (зрелые вирусные частицы) в ущерб жизнедеятельности самого растения.
    Вне живой клетки растения вирусы не размножаются, но способны сохранять свою вирулентность более или менее длительное время. Растительные вирусы, в отличие от большинства вирусов, паразитирующих на животных и человеке, более лояльны к своему хозяину и не доводят его до скорой гибели. Поражённые растения могут жить сколь угодно долго, и в этом особая опасность вирозов.
    В природе вирусы не являются такими агрессорами, какими они становятся, поселяясь на культурных растениях. Вирозы по вредоносности значительно превосходят грибковые и бактериальные болезни. Это связано с тем, что только вирусы становятся причиной вырождения сортов, и остановить этот процесс можно только полной заменой посадочного или посевного материала.
    Вырождение сортов ириса заключается в резком снижении ими декоративных качеств: "лепестки" цветков, видоизменяясь в худшую сторону, теряют присущие им сортовые особенности – то, ради чего, в основном, и работают селекционеры всего мира.
    Наибольший вред ирисам наносят два вида вирусов, которые вызывают более или менее сходные по симптомам заболевания: МОЗАИКА (Iris mosaic virus) и ШТРИХОВАЯ МОЗАИКА (Iris virus 1). Это – наиболее изученые вирозы. По внешним признакам они трудноотличимы друг от друга: это в состоянии сделать только опытный специалист-вирусолог. А для ирисовода-любителя это и не столь важно.
    Указанные вирусы на искусственных питательных средах in vitro не только не размножаются, но и погибают в течение 3-6 дней. На поверхности загрязнённых режущих инструментов они сохраняются немногим более 3-х дней. В отмерших растительных остатках могут сохраняться более продолжительное время – от 1 до 12 месяцев.
    В вирусологии существует около десяти методов диагностики фитопатогенных вирусов, большинство из которых требует особых знаний, дорогостоящих химреактивов и специальной техники. В нашем случае подробнее остановимся на более доступном – визуальной диагностике. Для удобства дальнейшего изложения будем пользоваться обобщающим обе болезни термином "вирусная мозаика".


Диагностика вирозов по листовому вееру

    Тщательный осмотр листьев во время вегетации является одним из основных в диагностике вирозов. Основные симптомы болезни здесь вполне различимы и невооружённым глазом. Мозаика проявляется в виде хлоротичных светлых точек, пятен и штрихов различной длины. Все они имеют хаотичное расположение вдоль жилок листа и концентрируются в большинстве случаев в верхней половине листа (у сеянцев – по всей площади листочков – снизу и до самых кончиков).
    На бородатых ирисах этот основной симптом в холодную (ниже +10^оС) и очень жаркую (выше +30^оС) погоду может маскироваться, поэтому каждое растение необходимо осматривать в течение всего вегетационного периода.
    Необходимо научиться отличать межжилковый хлороз листа от вирусной мозаики. Хлороз – это болезнь, вызванная нарушением хлорофилообразования вследствие недостатка одного или нескольких элементов питания (макро- и микроэлементов) или – ухудшением почвенно-воздушного режима (заболачивание, засоление и другие вызывающие уплотнение почвы процессы). Хлорозные листья по всей длине имеют полосы тёмно-зелёного цвета, чередующиеся с полосами более светлого тона.
    Наиболее чётко вирусная мозаика заметна:
    a) у ТВ, SMB, SFMB, IMB, SDB, MDB, AB ирисов – на вновь появляющихся молодых листьях, выходящих из середины веера. Более старые листья этого же веера могут маскировать проявление данного симптома. На этой группе ирисов вирусную штриховатость удаётся рассмотреть только в непосредственной близости от самого растения в тёплый ясный день. Начальные этапы болезни характеризуются небольшим количеством светлых штрихов, располагающихся в верхней части самого молодого листа веера;
    б) у SPU ирисов – практически, на всех листьях. Хаотично расположенные штрихи концентрируются в верхней части листьев. На Спуриях симптомы мозаики не маскируются вообще и заметны даже издали. Со временем штрихи сливаются, некротизируются и вызывают усыхание верхушек листьев. Больные растения имеют некрасивый внешний вид. Нужно отметить то, что сортовые Спурии очень сильно поражаются вирозами.
    На остальных группах ирисов симптоматика вирусной мозаики мною не изучалась, но можно предположить, что она не будет сильно отличаться от вышеуказанных.


Диагностика вирозов по бутонам и цветкам

    Время цветения также является одним из основных периодов выбраковки больных растений. Каждый сорт реагирует на болезнь по-своему: это зависит, прежде всего, от наличия в цветках тех или иных красящих веществ (пигментов).
    1. У культиваров с белой или приближающейся к белой (бледно-жёлтой, бледно-голубой и др.) окраской цветков "лепестки" могут иметь вид грязноватой, немного промокшей или промасленной (пергаментной) бумаги, особенно – по краям. По всей площади "лепестков" могут появляться немногочисленные (единичные) полупрозрачные штрихи и пятна.
    2. На "лепестках" культиваров со светлоокрашенными цветками (голубыми, жёлтыми, оранжевыми, светло-сиреневыми) заметны немногочисленные синие, фиолетовые, коричневые или иного цвета тёмные хаотичные штрихи (эта форма проявления болезни хорошо видна в альбоме "ИРИСЫ" (Г. И. Родионенко, М., Колос, 1981 г.) на сорте ДЕЗЕРТ УИНД – стр. 95).
    3. Некоторые сорта могут изменять окраску цветка и становятся пёстрыми. Этот симптом очень напоминает проявление вирусного "пестрения" на тюльпанах, когда основная окраска "лепестков" чередуется с обесцвеченными участками. Такие растения хорошо заметны издалека и их следует немедленно удалять. Данное проявление вирозов характерно для сортов, которые были заражены более 7-10 лет назад. Существует ряд новых сортов, имеющих пёструю окраску долей околоцветника (белые пятна на тёмном фоне или тёмные пятна на светлом фоне и т. п.) не вследствие заражения вирусной мозаикой, а – генетически закреплённую (BEWILDERBEAST, NIGERIAN RASPBERRY, GNU AGAIN, TIGER HONEY и др.). У таких сортов необходимо с особой тщательностью осматривать листья на признаки вирусной мозаики.
    4. Часть культиваров реагирует на болезнь так называемым "краевым ожогом" "лепестков". Симптом аналогичен проявлению вирусной мозаики на сортовых крокусах (клубнелуковичных растениях семейства Касатиковых), где вследствие заражения развиваются уродливые, как бы с "оплавленными" краями лепестков цветки.
    5. Одним из самых характерных признаков болезни (независимо от окраски цветка) является изменение текстуры и формы "лепестков" в худшую сторону. Они имеют при этом излишнюю некрасивую морщинистость: на них появляются нехарактерные для культивара складки, уродливые спайки и вздутия (пузырчатость) по всей поверхности. Из-за этого часто нарушается симметрия отдельных "лепестков" и всего цветка. Даже если ничего не знать о вирусных болезнях, при взгляде на такой цветок остаётся смутное ощущение чего-то неестественного и уродливого в его форме, а для самоуспокоения это зачастую объясняется последствиями каких-либо неблагоприятных условий данного сезона (заморозки, засуха или избыточное увлажнение, нехватка элементов питания и т. п.).
    6. Листочки обвёртки у нераспустившихся бутонов могут иметь синие, фиолетовые или иного цвета хаотичные штрихи различной длины. Симптом хорошо заметен на тёмноокрашенных цветках, когда листочки обвёртки ещё достаточно зелёные.
    Кроме вышеупомянутых симптомов нужно отметить и некоторые другие, характерные, однако, не только для вирозов. Эти признаки назовём условно "побочными", т. к. для идентификации вирусной мозаики их явно недостаточно.


Побочные симптомы вирозов

    1. Поражённые растения, как правило, имеют пониженные ростовые качества (тяготеют к карликовости). Это очень заметно в период массового цветения. Высота цветоносов и листьев больных растений на 10-40% ниже, чем у их здоровых "братьев". Цветоносы имеют повышенную ломкость, часть бутонов может не распуститься вообще.
    2. У бородатых ирисов краевые листья веера быстрее усыхают, а у всех остальных листьев в массовом порядке происходит усыхание верхушек. В результате этого веер не набирает такой мощи и силы, которая присуща данному культивару.
    3. Больные делёнки дольше других укореняются. При сильном заражении они могут впадать в нехарактерный для ирисов длительный покой: листья и корни не появляются в течение 1-2 лет, хотя само корневище остаётся жизнеспособным.
    Заражение вирусом мозаики происходит только при попадании сока больного ра-стения или вирусоносителя в ткани здорового. Из этого следует, что вирусы, сохраняющиеся в мёртвых растительных остатках, сами по себе не представляют никакой угрозы заражения, т. к. они не способны передвигаться и проникать в ткани растения.
    Использование загрязнённого режущего инструмента считается основным механизмом распространения вирозов ириса. Это происходит в период деления и пересадки разросшихся кустов, когда одним и тем же ножом или секатором ведётся обрезка старых корневищ, корней и верхней части листового веера сразу на многих растениях имеющейся коллекции.
    Чтобы полностью исключить возможность подобного заражения, необходимо приучить себя каждый отдельный куст делить отдельным обеззараженным инструментом. Ещё раз напомню, что на поверхности режущих лезвий в высохшем клеточном соке вирусы сохраняют свою вирулентность около 3-4 дней, а температура их гибели – приблизительно +72^оС.


Методы противовирусного обеззараживания режущих инструментов

    – Прокаливание режущей части (лезвия) на открытом огне в течение 1-2 минут;
    – Стерилизация в кипящей воде не менее 30 минут;
    – Стерилизация в чистом (96%) техническом или этиловом спирте не менее 15 минут;
    – Выдержка в 5%-м растворе марганцово-кислого калия (аптечная марганцовка) не менее 15 минут (5 граммов KMnO4 на 100 мл чистой воды);
    – Выдержка в чистом 40%-м формалине не менее 15 минут.

    При делении и пересадке следует как можно меньше пользоваться режущими инструментами. Веер с частью корневища лучше просто отломить от старой части куста. Листья можно не укорачивать, и это никак не повлияет на приживаемость делёнки. При этом не стоит прикасаться руками к сочащимся раневым поверхностям (к срезам, порезам или разломам). Срезку цветоносов можно производить и одним и тем же инструментом, но – с последующей немедленной ручной выломкой остатка цветочного побега. Загнивающие во время вегетации корневища зачищают до здоровой части и сразу же всю рану посыпают сухой марганцовкой и растирают её по всей раневой поверхности.
    В естественных условиях фитопатогенные (греч. phyton – растение, pathos – болезнь) вирусы распространяются, в основном, насекомыми, использующими поражённые растения в качестве источника своего питания. Поэтому все виды грызущих и сосущих насекомых можно отнести к группе потенциальных вирусоносителей.
    Вирусоносительство предполагает то, что вирус должен какое-то время сохранять свою жизнеспособность в организме этих насекомых и в процессе их питания может "переходить" в клеточный сок растения. Растительные вирусы по своей природе не могут успешно размножаться в животном организме, т. к. нуклеиновые кислоты у них сильно различаются. Остаётся только один вариант вирусоносительства, когда попавшие с пищей вирусы сохраняются в организме насекомых непродолжительное время. Это обусловлено ещё и тем, что процесс питания взрослых насекомых-вредителей или их личинок, сам по себе, протекает сравнительно короткий период времени – только до наступления фазы половой зрелости. Потом, после совершения всех таинств продолжения рода, насекомые, в большинстве случаев, просто погибают. Но и этого времени оказывается достаточно, чтобы нанести коллекции ирисов (или других культурных растений) вполне ощутимый урон.
    Видовой состав насекомых – вредителей ириса – достаточно обширен. Одни из них питаются внутри стеблей или бутонов (озимая и др. виды совок, луковая муха). Другим "по душе" только сочные "лепестки" и пыльники распустившихся цветков (жуки: бронзовки, олёнки, яблонные цветоеды и др.). А третья группа питается исключительно зелёными листьями или их соком (некоторые виды цикадок, пьявиц, блох, пилильщиков и др.).
    Многие авторы при описании вирозов ссылаются на то, что основными вирусоносителями ириса (и других цветочно-декоративных растений) являются некоторые виды тлей. Это утверждение,по-видимому, не соответствует действительности, т. к. тля почему-то эту культуру обходит стороной, и я ни разу за 20-летнюю практическую работу с вредителями и болезнями растений на ирисах никаких видов тлей не встречал, хотя за последние 10 лет это сосущее насекомое стало бичом многих садовых и полевых культур.
    Все вышеперечисленные вредители могут служить распространителями вирусной мозаики. И остановить это "зло" можно только истребительными мерами, которые заключаются в своевременной обработке надземной части ирисов химическими или биологическими препаратами. Но это полностью неприемлемо для вредителей-цветоедов, период питания которых строго ограничен временем цветения. Химическая обработка в этом случае неэффективна и очень опасна. Ручной сбор и уничтожение этих довольно крупных насекомых требует постоянного присутствия человека на участке в течение всего времени активного солнечного освещения, что трудновыполнимо. Вполне надёжны цветовые (голубые, синие, жёлтые) клеевые ловушки, но их почти невозможно отыскать в свободной продаже. Поэтому эта группа вредителей, которая больше распространена в южных регионах, очень опасна в плане передачи вирусных болезней.
    В подобном случае единственная надежда – на немедленное удаление со всех отцветающих кустов этих теперь уже не нужных цветоносов. Эта операция проводится путём ручной (и только ручной!) выломки у основания корневища цветоносных побегов с ещё зелёными прикорневыми листьями, без прикосновения руками к сочащейся поверхности.
    Вероятность передачи вирусов фитопатогенными грибками, вызывающими некоторые болезни ириса, также вполне существует. Это связано с тем, что, питаясь и размножаясь в живых тканях растения, грибки также нашпиговываются ультрамикроскопическими вирионами. И внутри спор или других частей грибка они довольно длительное время могут ожидать момента проникновения своего временного хозяина в живую клетку растения. В настоящее время разнообразие химических фунгицидных (лат. fungus – гриб, caedo – убиваю) препаратов настолько велико, что с подобными болезнями ириса (ржавчина, гетероспориоз, серая гниль и др.) можно вполне успешно справляться.
    В поражённом растении вирусы локализуются в большей степени в надземной части и корневище и совсем незначительно – в корнях. Существует мнение, что участки, на которых находились вирозные растения, очень опасны и непригодны для дальнейшего использования в течение 5-7 лет. Такой "отдых" почвы был бы, конечно, самым идеальным вариантом, но это, понятно, трудновыполнимо в наших реальных условиях. Практика показывает, что при тщательном удалении всех растительных остатков, участок вполне пригоден для выращивания ирисов или других садовых растений. Это основывается на том, что даже если в почве и остались какие-то растительные остатки с живыми вирусами, то заражение возможно только через посредника (почвенных вредителей и патогенных грибков), который сначала будет питаться этими частицами, а потом – корнями вновь посаженных растений. Вероятность таких событий очень мала. А если на таких участках применить ЭМ-технологию (использование препарата Байкал ЭМ-1, содержащего сложный живой микробиологический комплекс полезных организмов), то в течение одного года можно освободить почву не только от вирусов, но и от всех вредоносных грибков и бактерий. ЭМ-препарат ускоряет разложение находящихся в почве растительных остатков, без которых вирусы очень быстро погибают.
    Существует ещё одна группа вирусоносителей, которая может представлять большую угрозу ирисам: это – все виды луковичных, клубнелуковичных, клубневых, корне-клубневых и корневищных растений, которые широко используются в озеленении садовых участков. Упоминавшиеся уже тюльпаны и крокусы, а также лилии, нарциссы, гладиолусы, юноны, мускари, хосты и т. д. – все они сильно восприимчивы к вирозам, в том числе и к вирусной мозаике. Красиво упакованый посадочный материал из Голландии или других стран не гарантирует его 100%-й чистоты, потому что, по ряду объективных и субъективных причин, в реальности это – практически, невыполнимая задача.
    И единственная надежда – только на нас самих. Борьба с вирозами должна проводиться широким фронтом, не оставляя без внимания ни одно посаженное растение. В противном случае садовый участок со временем может превратиться в вирусную резервацию, которая может сгодиться только для научных изысканий вирусологов-фитопатологов.


Селекция, семеноводство и вирусы

    Вначале нужно предупредить, что вовлечение заведомо больных вирозами растений в селекционно-семеноводческий процесс – весьма неблагодарное занятие. Вирусы настолько малы, что им достаточно одной микроскопической растительной клетки, чтобы пережить в ней возможные трудности и дождаться лучших времён. Даже пыльцевые зёрна больных растений могут содержать вирионы и при помощи ветра или насекомых-опылителей – путешествовать на значительные расстояния.
    Заражение посредством инфицированной пыльцы возможно лишь в случае прорастания пыльцевых зёрен в рыльце пестика, когда их содержимое попадает внутрь завязи. Дальнейшее поведение вирусов непредсказуемо. Они могут обитать только в развивающихся семенах и семенной коробочке, а могут и пуститься покорять и остальную часть растения. Возможность инфицирования через пыльцу доказана на примере вирусного пестрения тюльпанов.
    В селекционно-семеноводческой практике на различных культурах установлено, что заражённые вирусами растения в различных комбинациях скрещивания не дают 100%-й гарантии заражения семенного материала. По этому поводу пришлось прибегнуть к конкретной статистике по вирусным болезням среди животных.
    Речь пойдёт о вирусном лейкозе КРС (крупного рогатого скота). Мало кому известно, но ветеринарная служба с развалом СССР "упустила" контроль над этой коварной болезнью, которая в те годы выявлялась в единичных случаях. А так как серологический анализ крови – довольно дорогое удовольствие, то его попросту перестали делать совсем. Спохватившись, к концу 90-х годов обнаружили ужасающую картину: в отдельных регионах более половины всего поголовья оказалось инфицированным. Причём заражение велось самими же ветеринарными работниками на вполне законных основаниях – посредством использования многоразовых шприцев и инъекторов, которыми по несколько раз в год вводили каждому животному вакцину и другие препараты.
    Использование одноразовых шприцев на КРС затруднено из-за очень толстых кожных покровов животных. А постоянная стерилизация многоразовых шприцев при массовой вакцинации обычно не проводится. Но суть вовсе не в этих шприцах и других нестерильных инструментах, которыми пользовались, пользуются и будут пользоваться ещё длительное время. Раньше более строго подходили к вопросам более раннего выявления заболевших животных – посредством лабораторного обследования крови, проводившегося 1-2 раза в год. От инфицированных сразу же избавлялись, и это было основным, обязательным для исполнения и непререкаемым ветеринарным законом в борьбе с вирусным лейкозом.
    Вышеприведённый случай ещё нужно дополнить следующим: инфицированные коровы, находящиеся на самых разных стадиях болезни, более чем в половине случаев приносили вполне здоровое потомство. Объяснение такого факта не поддаётся здравому смыслу. Видимо, даже в безвыходной ситуации природа всё же даёт свой последний шанс.
    То же самое происходит и у растений – даже сильно заражённые вирусами экземпляры дают определённый процент вполне здоровых семян. Инфицированные же семена любых культур можно оздоровить не очень сложным способом, которым часто пользуются в овощеводстве. Суть его заключается в том, что такие семена можно высевать только после двухлетнего сухого хранения в обычных условиях. В них вирусы обычно не сохраняются. Хотя в селекционной практике этот приём не очень приемлем из-за удлинения срока выведения новых сортов.
    Из всего вышесказанного не следует всё же делать вывод о возможности практического использования инфицированных растений в скрещиваниях и получении семян. В дальнейшем можно столкнуться с очень серьёзными проблемами, которые сейчас трудно себе представить.
    Селекционно-семеноводческая работа также должна опираться на опыт недопущения инфицирования как получаемых семян, так и материнского растения. В связи с этим нужно строго придерживаться следующих правил:
    a) при полном раскрытии цветка сразу же удаляются все фолы (отрыванием вниз). Это защитит его от нежелательного для гибридизатора варианта свободного опыления, но, главное, – поможет отвадить от него жуков-цветоедов, которые в массе слетаются на яркоокрашенные цветки (фолы при этом являются для них главной посадочной площадкой);
    б) у Спурий (особенностью которых является обильное нектаровыделение, привлекающее к себе не столько бабочек, сколько всё тех же жуков-цветоедов) операция по удалению фолов не даёт желаемого результата. Поэтому более надёжен способ полной изоляции цветков. Изоляторы можно делать из газетной бумаги, ткани или лёгкого укрывного материала плотностью 17 г/м (Спанбод, Агрил, Агротекс и т. п.).
    в) на одном стебле нужно оставлять не более 1-3 завязавшихся коробочек, т. к. с их увеличением количество полноценных семян к моменту созревания резко уменьшается. Лишние цветки или выламываются ещё на стадии бутонов (для стимуляции завязываемости коробочек на нужных цветках), или сразу после увядания удаляются ручным обламыванием (без прикосновения руками к сочащимся ранам).
    Все эти несложные приёмы позволят свести риск заражения вирозами к минимуму.


Устойчивость к вирозам

    К сожалению, все природные виды ириса не имеют генетически обусловленного иммунитета к той или иной вирусной болезни. Это же относится и ко всем гибридным культиварам. В будущем, возможно, с помощью генной инженерии эту проблему и удастся разрешить. А пока можно говорить лишь о возможности выращивания оздоровлённого (свободного от любых вирусов) посадочного материала. "Растения из пробирки" или "меристемная культура" – это уже не новинка, а реальность сегодняшнего дня. Культура ткани in vitro широко используется во всём мире, а цветочно-декоративные культуры здесь явные фавориты.
    В природных условиях на дикорастущих видах ириса вирусную мозаику встретить можно, но очень и очень редко, а среди таких видов, как I. pumila, I. flavissima и некоторых других – практически, никогда. Здесь можно провести некую аналогию с видовыми тюльпанами (т. Кауфмана, т. Фостера, т. Грейга), о которых многие издания утверждают, что они, в отличие от гибридных культиваров, полностью устойчивы к вирозам. На самом деле, такое утверждение не соответствует действительности и зачастую вводит в заблуждение.
    В подобных случаях можно говорить о так называемой "фенологической устойчивости". Термин означает то, что раннецветущие виды избегают естественного заражения из-за отсутствия в это время большинства грызуще-сосущих насекомых-вредителей, которые являются основными распространителями вирусов в природных условиях. Кроме того, все эти виды имеют очень короткий период цветения (около недели), небольшие размеры надземной части (что не очень привлекает листогрызущих насекомых), большую пространственную изоляцию и ранний уход в состояние вынужденного покоя.
    Как ни странно, но и в культуре эти виды показывают высокую устойчивость к вирозам, что, вероятно, и послужило основанием делать на этот счёт неправильные выводы.
    Одно из самых положительных качеств карликовых видов ириса состоит в том, что при их делении и пересадке совершенно не нужны режущие инструменты.
    В фитопатологии существует такое понятие как ТОЛЕРАНТНОСТЬ – способность сорта не снижать или снижать незначительно основные хозяйственно ценные свойства (урожайность, декоративные качества и т. п.) при поражении той или иной болезнью. Толерантность – генетически обусловленный признак. Среди огромного количества современных сортов Бородатых ирисов толерантность к вирусной мозаике – не такое уж и редкое явление. Такие сорта при заражении вирусной инфекцией, практически, ничем не отличаются от здоровых. Разве что при более тщательном осмотре можно обнаружить незначительную хлоротичную вирусную штриховатость кончиков отдельных ли-стьев, да немногочисленные тёмные или водянистые (на белых "лепестках") штрихи на цветках.
    На первый взгляд, толерантность имеет самое положительное значение, т. к. сохраняются все сортовые особенности таких растений, ради чего ирисы и выращиваются. Но, с другой стороны, такие растения являются скрытыми вирусоносителями и способствуют ещё большему распространению вирусов среди садовых растений.
    Диагностика вирозов ириса по внешним симптомам не может считаться достоверной и окончательной. Это связано не только с проявлением толерантности у части культиваров, но и с тем, что видимые симптомы проявляются через один-три сезона с момента инфицирования.
    Для выявления и слабозаметной вирусной инфекции существуют другие методы диагностики, которые можно использовать и в своей практической работе с ирисами.
    Метод перезаражения – позволяет установить наличие вирусов путём втирания сока исследуемого растения здоровому растению того же вида. В качестве индикаторного растения важно подобрать сорт (или дикорастущий вид), который очень быстро и отчётливо реагирует на вирусную инфекцию. Метод неудобен тем, что результата приходится ждать до следующего сезона.
    Метод растений-индикаторов – позволяет ускорить процесс получения достоверной информации путём использования однолетних видов растений (из различных семейств), которые бурно реагируют на вирусную инфекцию. Такими растениями могут быть: огурец, томат, перец, шпинат, настурция, астра однолетняя, табак декоративный и другие. Втирая сок исследуемого растения ириса в листочки растений-индикаторов на ранних этапах развития (3-4 настоящих листа), уже через месяц можно получить тот или иной результат. Единственная заковыка заключается в том, что в отношении ириса этот метод, практически, не отработан и придётся самостоятельно искать растения-индикаторы для выявления вирусной мозаики.
    Химический метод – основан на реакции поражённых тканей растения на некоторые реактивы. С помощью химических реакций устанавливают отличия больных растений от здоровых.
    Люминесцентный метод – основан на явлении первичного (без какого-либо вмешательства) или вторичного (с использованием специальных красителей-флуорохромов) свечения тканей растений, поражённых вирусами, в ультрафиолетовом свете.
    Последние два метода диагностики по своей сути не очень сложны, но потребуют овладения некоторыми знаниями и приобретения специальных химических реактивов и других приспособлений. За помощью в этом вопросе можно обратиться в крупные НИИЗР (Защиты Растений), селекционные учреждения любого профиля (зерновых, бобовых, масличных, эфиромасличных, технических, овощных или плодовых культур).
    Нужно отметить, что при электронном микроскопировании больных растений ириса чаще всего выявляется смешанная вирусная инфекция. Причём, кроме основных вирусов, ирисы могут поражаться и другими, ранее характерными для совершенно иных растений: табака, томата, перца, зерновых злаковых культур, мари белой и т. д. Внешнее проявление смешаной инфекции может дополняться и такими симптомами, как кольцевая хлоротичная пятнистость, кольцевая некротическая пятнистость, деформация и неравномерность развития листовых пластин и др. Но всё же доминирующими признаками и при комплексной вирусной инфекции остаются проявление мозаики (штриховатости) верхней части листьев и частичное или полное снижение декоративности цветков у восприимчивых культиваров.


Вирусы под контролем

    Ирисы для наших цветоводов – относительно новая культура, поэтому об их болезнях, а тем более, о – вирусных, многим просто ничего не известно. В огромном потоке печатной продукции цветоводческой направленности о вирозах зачастую и не упоминается, а если что-то и промелькнёт, то – общими фразами, без всяких пояснений и предупреждений.
    Не очень яркая выраженность симптомов болезни, невозможность применения сравнительного анализа в период цветения ирисов – всё это накладывает на ситуацию свой негативный отпечаток. Конечно, лучшим вариантом познания болезни служило бы сравнение больного и здорового цветка одного сорта, – ведь каждый сорт реагирует на вирусную мозаику совершенно по-разному. Но мне кажется, что, в любом случае, многие цветоводы просто не решились бы уничтожить такие растения, потому что приобретали их за немалые деньги. В этом кроется ещё одна причина быстрого распространения вирозов. А недопонимание или просто нежелание трезво оценивать данную проблему (что характерно для нашего массового цветовода-любителя) ещё больше усугубляет ситуацию.
    Было бы замечательно, если бы каждый из нас уяснил раз и навсегда, что поражённые вирусными болезнями растения уже не представляют никакой ценности, – независимо от того, за какие деньги они приобретались. И продавать, дарить или обменивать такие растения просто недопустимо.
    Поведение вирусов на нашем садовом участке невозможно предугадать, т. к. болезнь какое-то время протекает в скрытой форме. Но если постоянно, из года в год тщательно удалять все подозрительные на вирусную мозаику растения, то коллекцию можно поддерживать в относительной чистоте достаточно длительное время.
    Выбракованные растения необходимо сразу же уничтожать. Их нельзя закладывать в компостную кучу или закапывать на своих участках. Такие растения лучше сжечь или закопать глубоко в землю где-нибудь на пустыре вдали от садовых участков.
    Все эти несложные приёмы "сдерживания вирусной атаки" уже давным-давно взяты на вооружение тюльпаноманами. Многие этого не знают, но культура тюльпана в своё время пережила настоящий удар из-за распространившейся повсеместно эпидемии вирусного пестрения. Эту болезнь более сотни лет назад, когда о вирусах ещё ничего не знали, лелеяли и пестовали сами же цветоводы – в виде неожиданно появляющихся необычно "красивых" полосатых растений, которые возводились в ранг сорта и продавались по невообразимым для нас ценам. Пестрение унесло в небытие сотни и тысячи уникальных сортов того времени. С раскрытием тайны болезни культура тюльпана возродилась и в настоящее время занимает одно из лидирующих мест среди весенних луковичных растений. А поддерживать чистоту сорта помогают всё те же методы постоянной выбраковки, а в промышленном производстве – периодическое "вбрасывание" посадочного материала "из пробирки".
    Беспроблемных культур не существует вообще. А внимательное отношение ко всем болезням своих "пациентов" сегодня – не приведёт к болезненному реагированию на ужасные последствия в недалёком будущем. В противном случае может получиться то, что много раз случалось с выдающимися биологами. Один из близких нашей теме случаев: в 70-е годы прошлого столетия З. П. Бочанцева (советский ботаник-исследователь и селекционер, автор монографии по тюльпанам природной флоры СССР) получила инфаркт, когда весной "внезапно" запестрела большая часть двухтысячной коллекции тюльпанов, которую она десятилетиями создавала в одном из ботанических садов Советского Союза.
    Вирусы – такая же неотъемлемая часть жизни на Земле, как и мы с вами. В чём заключается их предназначение, пока неизвестно. Вирусы были, есть и будут, и изолироваться от них невозможно. Единственная надежда – на принципы "мирного сосуществования", важной составляющей которых являются предупредительные меры. Именно они позволяют держать вирусы под контролем.

(Из Бюллетеня РОИ за 2006 год)

Опасный враг ирисов

Н. Горохова, Л. Миронова (Владивосток)

(Из Бюллетеня РОИ за 2001 год)

Вверх

Из личного опыта

И. Лукашин

(Из Бюллетеня РОИ за 1999 год)

Вверх

Болезни бородатых ирисов

Е. Сытов, Г. Першина (ВНИИССОК), И. Васильева, Л. Трейвас (ГБС РАН)

(Из Бюллетеня РОИ за 1998 год)

Вверх

Удивительное рядом

Игорь Лукашин (Московская область)

(Из Бюллетеня РОИ за 1994 год)

Вверх

Изучение фертильности IB* ирисов, 2004

Марки Смит (США)

    В конце восьмидесятых годов, когда я только изучала механику и эстетику опыления ирисов, мне советовали (как и большинству из нас) не тратить время на работу с Интермедиа ирисами – по причине того, что в большинстве своём они были бесплодными. Их несбалансированные комбинации из 44 хромосом, выражаемые как 12 12 10 10, приводили к низкой частоте появления функциональных гамет и к необычной сегрегации у тех немногих, которые были функциональны. Вдобавок к этому, пыльца, выглядевшая пушистой и жизнеспособной, имела низкий процент функциональных зёрен и обычно была недейственной. Однако будучи новичком в этом деле, я всё же не могла удержаться от эпизодического опыления этих "запретных" красавиц, что, как оказалось, также время от времени вознаграждалось – иногда скрещивание IB x SDB давало немного семян.
    Ирисоводы Тихоокеанского Северо-Запада всегда знали об IB ирисах, которые могут давать потомство. Джордж Шуп (George Shoop) из Орегона, Кэрол Лэнкоу (Carol Lankow) и Терри Эйткен из штата Вашингтон с успехом использовали их в своих гибридизационных программах. Шуп занимался преимущественно IB x SDB скрещиваниями, используя в качестве материнского растения свои любимые сорта DANCIN' (Shoop '83), SPRING DANCER (Shoop '84) и SUNNY HONEY (Shoop '85) – в попытках привнести свои излюбленные оранжевые бородки в класс SDB в большом количестве. Примерно в то же время Кэрол Лэнкоу также проводила IB x SDB скрещивания для получения своих так называемых "42-шек". Она также проводила и IB x TB скрещивания, чтобы получить 46-хромосомные культивары, возможно, – Бордюрные Бородатые**, которые были бы элегантнее, чем существующие "укороченные" TB ирисы с их слишком крупными цветками. В качестве примера можно привести её IB сорт FRIDAY HARBOR (Lankow '89), явившийся родителем её Бордюрного FRIDAY BLUES (Lankow '97). Терри Эйткен удачно продолжил IB x TB линию интродукцией своих собственных культиваров, использовав IB HELLCAT (Aitken '83) в качестве родителя для KONA NIGHTS (Aitken '92, BB). HELLCAT также является родителем COOL TREAT (Lankow '94, BB), который, в свою очередь, дал оранжевобородый белый Бордюрный SNOOPY (Lankow '96) и INDIGO DOLL (Lankow '97, BB) – улучшенную неглекту также с оранжевой бородкой. Достаточно только взглянуть на родословную этих сортов, чтобы понять, что IB ирисы полезны для гибридизации. Пионерская работа этих гибридизаторов внесла большой вклад в создание новых официальных определений для Бордюрных Бородатых ирисов Американским Обществом Ириса.
    Кроме того, орегонские селекционеры Пол Блэк и Кис Кеппел и Бэрри Блайз из Австралии также использовали различные поименованные IB ирисы для создания новых культиваров. Среди потомства RED ZINGER (Black '85) был сорт SINISTER DESIRE (Black '98, IB), а с помощью LOGO (Keppel '86) был создан сорт TRIVIA (Keppel '90, IB). IB Блайза ZING ME ('90) дал ему целый список Бордюрных Бородатых сортов, на данный момент включающий: BESOTTED ('97), FLAVOURS ('96), INGENIOUS ('95), LIRIQUE ('96) и SOUL SOUND ('95). Хотя ZING ME – не лучшей формы, зато он перенёс характерное пятно SDB ирисов в класс Бордюрных, чего так стремился добиться Джордж Шуп.
    В 1998 году редактор печатного издания Median Iris Society Нила Хьюджес (Nyla Hughes) попросила меня провести официальную проверку IB ирисов в моём саду на их фертильность. В тот год в саду росли 33 сорта Интермедий, все – двухлетнего возраста, и я их все протестировала. Каждый культивар был опылён дважды в начале сезона – пыльцой Стандартных Карликов, а также дважды, примерно через 10 дней, – пыльцой Высоких Бородатых. По возможности использовалась пыльца сортов или проверенных на отцовскую фертильность сеянцев. Опыление пыльцой SDB ирисов дало хороший выход семян (10 семян или больше) у примерно половины образцов (у пятнадцати культиваров), а опыление пыльцой TB ирисов – даже немного лучший – с хорошим выходом семян у 17 культиваров. Результаты явно развеяли миф о бесплодности Интермедий.
    Вот краткое повторение итогов первого тестирования в 1998 году:
DONEGAL (Keppel '97), FATHOM (M. Smith '97), GALWAY (Keppel '97), GEISHA (M. Smith '97) и SEASON TICKET (Gatty '95) не завязали семян ни от SDB, ни от TB опылителей.
    Нижеперечисленные сорта оказались бесплодными при их опылении пыльцой SDB ирисов, но завязали семена от пыльцы TB культиваров. В этом сыграла свою роль погода. Во время первых недель цветения IB в Якиме (Yakima) температуры были значительно выше нормы, в отдельные дни приближаясь среди ирисов к 100оF. Однако во время раннего цветения Высоких Бородатых ирисов погода стала облачной и довольно прохладной, что, по-видимому, способствовало завязыванию семян при использовании пыльцы TB. Количества семян, полученные от завязавшихся опылений, были следующими:

ANGEL HEART (Aitken '96)	одна коробочка, 8 семян, х Romantic Evening
CARRIWITCHED (Innerst '93)	одна коробочка, 9 семян, х пликатный сеянец Кеппела
DISCOVERED GOLD (Jones '96)	две коробочки, 20 и 8 семян, х Fashion Designer
IMPERATIVE (Black '97)	две коробочки, 14 и 24 семечка, x Romantic Evening
LONDONDEDRRY (Keppel '96)	две коробочки, всего 6 семян, х Pond Lily
LUNAR FROST (Keppel '96)	одна коробочка, 24 семечка, x Aura Light
MOONGLADE (Keppel '98)	одна коробочка, 14 семян, х Flights of Fancy
PRISM (M. Smith '95)	две коробочки, 18 и 16 семян, x Everywhere
SAILOR (M. Smith '96)	две коробочки, 17 и 18 семян, х пликатный сеянец Кеппела
SINISTER DESIRE (Black '98)	одна коробочка, 3 семечка, х Romantic Evening
STARWOMAN (M. Smith '98)	две коробочки, 22 и 13 семян, х пликатный сеянец Кеппела
TANTRUM (Keppel '97)	одна коробочка, 10 семян, x Screen Play

    Следующие сорта оказались фертильными при опылении их пыльцой SDB ирисов, но – нефертильными при опылении пыльцой TB ирисов:

COUNTRY DANCE (E. Jones '97)	одна коробочка, 7 семян, х Chanted
MARRIS (Innerst '96)	две коробочки, 28 и 12 семян, х сеянец М. Смит

    Следующие сорта оказались фертильными при опылении их пыльцой как SDB, так и ТВ ирисов:

BLAST (Hager '93)	две коробочки, 15 и 13 семян, х пликатный SDB сеянец М. Смит одна коробочка, 7 семян, х TB Sneezy
BOLD STROKE (E. Jones '93)	две коробочки, 29 и 26 семян, х амена SDB сеянец Эйткена две коробочки, 16 и 8 семян, х TB Hello Darkness
CHUCKATUCK (Innerst '98)	две коробочки, 25 и 27 семян, х SDB Marksman одна коробочка, 21 семечко, х ТВ Aura Light
DARK WATERS (Aitken '92)	две коробочки, 18 и 37 семян, x сеянец М. Смит от SDB Chubby Cheeks две коробочки, 28 и 30 семян, х Hello Darkness
FRUIT COCKTAIL (Keppel '97)	одна коробочка, 18 семян, х SDB Morning's Blush одна коробочка, 10 семян, х TB Fashion Designer
GNU RAYZ (Kasperek '97)	одна коробочка, 18 семян, х SDB Ringer одна коробочка, 5 семян, х пликатный TB сеянец Кеппела
GURU (Keppel '95)	одна коробочка, 30 крупных семян, х пликатный сеянец М. Смит одна коробочка, 18 семян, х TB Screen Play
IMPROVISATION (Hager '92)	одна коробочка, 34 семечка, х SDB Chanted одна коробочка, 25 семян, х TB Pond Lily
MING (M. Smith '98)	две коробочки, 14 и 4 семечка, х гляциата SDB сеянец М. Смит две коробочки, 14 семян, х TB Answered Prayers
PERFUME SHOP (Keppel '98)	одна коробочка, 13 семян, x SDB Hoodlum одна коробочка, 7 семян, x TB Flights of Fancy
PROTOCOL (Keppel '96)	одна коробочка, 19 семян, x SDB Captive Sun две коробочки, 17 и 12 семян, x TB Aura Light
SMITTEN KITTEN (Aitken '91)	одна коробочка, 34 семечка, x SDB China Peach одна коробочка, 35 семян, x TB Pond Lily
THIS AND THAT (Black '98)	одна коробочка, 7 семян, x SDB Midnight Mist три коробочки, 10, 10 и 18 семян, x TB Everywhere

    Весной 2003 года я получила электронное сообщение от Ольги Уэллз (Olga Wells) из Британского Общества Ириса, с просьбой повторить проверку фертильности IB ирисов. Но поскольку мои IB ирисы были высажены всего за год до этого, было решено отложить проверку до весны 2004 года, когда растения достигнут двухлетнего возраста и образуют больше стеблей, что способствовало бы увеличению возможностей в предполагаемой работе. Как и в первоначальном исследовании, сначала я дважды скрещивала каждый культивар, используя пыльцу Стандартных Карликов; при этом я постаралась отобрать родителей с общими для них признаками: пликату опыляла пликатой, оранжевобородый оранжевобородым и т. д. – это могло бы дать интересные сеянцы, если бы завязывание коробочек прошло успешно. Также снова, примерно через 10-14 дней, я провела ещё по два скрещивания каждого культивара, используя на этот раз пыльцу Высоких Бородатых ирисов и снова акцентируя внимание на возможности получения заманчивых результатов. На этот раз, помимо сортов, я включила в программу и свои Интермедиа сеянцы, рассматривавшиеся мной в качестве возможных кандидатов на интродукцию.
    Все Интермедии были использованы в качестве материнских растений, тесты на фертильность пыльцы не проводились. Ли Уолкер (Lee Walker) рассказывал мне во время проведения Национального Съезда по Медианам (National Median Convention) в Порт-ленде, Орегон, что у него есть сеянцы, полученные от IB x TB скрещиваний; но он не исследовал ни лёгкость образования коробочек, ни количество семян в них. Погода в Якиме стала тёплой и солнечной гораздо раньше, чем обычно, продлив нам сезон цветения на две-три недели. (Я подозреваю, что последний "нормальный" сезон был где-то в районе 1940 года!). В то время как апрель был сухим и солнечным, май оказался облачным и прохладным, что весьма благоприятствует завязыванию коробочек, пока погода остаётся сухой.
    Из оказавшихся в доступе 27 культиваров, только один, LONDONDERRY, полностью разочаровал, образовав только одну пустую коробочку, хотя и KAHUNA был столь же "сдержан", дав всего одно семечко. В прошлом эксперименте LONDONDERRY произвёл шесть семян при опылении его пыльцой TB. Ниже вы найдёте результаты тестирования этого года – с краткими описаниями материнских и отцовских растений, числом образовавшихся коробочек, и количеством семян (в скобках). Читатель наверняка заметит, что в случае с сортом DELIRIUM использовались дополнительные опыления. Он показал себя фертильным и у меня и у Киса Кеппела, и Кис получил от него ряд новых Интермедий, которые могут стать замечательными новинками. Независимо от каких-либо тестирований, я использую этот конкретный ирис на протяжении нескольких последних лет и продолжу делать это и в дальнейшем.

    Фертильность IB ирисов в качестве материнских растений
    Были сделаны по две попытки каждого скрещивания, если не оговорено иного. Номер в скобках после указания числа коробочек обозначает количество сформированных семян.
ATTITUDE (K. Keppel '00), лиловая на белом пликата
               X SDB 02-19P2 (темнейшая лиловая на белом пликата): две попытки, семена не получены
               X TB STORM TRACK (темнейшая лиловая на белом пликата) : две коробочки (18 и 18 семян)

BANSHEE (M. Smith '05), чёрный, мандариновая бородка
               X SDB 96-09A (чёрный, мандариновая бородка): две попытки, семена не получены
               X TB FIERY TEMPER (красный/чёрный, двухтонный, мандариновая бородка): две коробочки (28 и 22)

BERING SEA (M. Smith '00), белый с синим жилкованием в центре F.
               X SDB DENALI (белый с синим жилкованием в центре F.): две попытки, одна коробочка (7)
               X TB 00-28Q (тёмно-фиолетовая на белом люмината): две коробочки (18 и 17)

BLACKCURRANT (M. Smith '99), тёмно-фиолетовая люмината
               X SDB 01-23L (красно-фиолетовая люмината): две коробочки (10 и 3)
               X TB 00-31B7 (с красным покрытием на жёлтом люмината): две коробочки (5 и 11)
               X TB HIGH MASTER (красно-фиолетовая на жёлтом люмината): две коробочки (5 и 12)

BLITZEN (M. Smith '00), бледно-лиловая люмината
               X SDB Keppel 98-10 (тёмно-лиловая люмината): одна попытка, одна коробочка (7)
               X TB 00-28L (тёмно-фиолетовая на белом люмината): две попытки, одна коробочка (7)

CAYENNE (M. Smith '06), тёмно-красный, мандариновая бородка
               X SDB 96-09A (чёрный, мандариновая бородка): две попытки, семена не получены
               X TB FIERY TEMPER (красный/чёрный, двухтонный, мандариновая бородка): две попытки, одна коробочка (7)

DELIRIUM (M. Smith '01), дымчато-золотистые S., жёлтые с тёмно-фиолетовым покрытием F., мандариновая бородка
               X SDB DENALI (белый с синим жилкованием в центре F.): две коробочки (26 и 12)
               X TB 01-31A (с фиолетовым покрытием на жёлтом люмината): три попытки, три коробочки (16, 13, 17)
               X TB ENTANGLED (тёмно-фиолетовая люмината, мандариновая бородка): две коробочки (16 и 14)

DRAGONMASTER (M. Smith '04), красно-чёрный, мандариновая бородка
               X SDB 96-09A (чёрный, мандариновая бородка): две попытки, одна пустая коробочка (0)
               X TB FIERY TEMPER (красный/чёрный, двухтонный, мандариновая бородка): две попытки, одна коробочка (2)

ELYSIUM (M. Smith '03), персиковая гляциата, мандариновая бородка
               X SDB 02-23GyT (бледно-персиковая гляциата): две коробочки (4 и 31)
               X TB 00-24BPG3 (светло-персиковая гляциата, большое количество бутонов): четыре попытки, четыре коробочки (29, 21, 35, 32)

FATHOM (M. Smith '97), сине-голубой
               X SDB 00-02A (насыщенно-синий, белая бородка): две коробочки (6 и 3)
               X TB RAPID FIRE (синий с фиолетовым оттенком, большое количество бутонов): три попытки, три коробочки (5, 4, 2)

HARMONIUM (M. Smith '02), ярко-жёлтая гляциата
               X SDB 02-23GyT (бледно-персиковая гляциата): две коробочки (12 и 15)
               X TB 00-24C (кремовая гляциата, золотистые края, мандариновая бородка): две попытки, семена не получены

HOP TOPIC (K. Keppel '03), розово-коричневая на жёлтом люмината
               X SDB 01-23L (красная на белом люмината): одна попытка, семена не получены
               X TB HIGH MASTER (красно-фиолетовая на белом люмината): две коробочки (2 и 2)

JERSEY CREAM (K. Keppel '02), кремово-белая гляциата
               X SDB 01-23L (белая гляциата): две попытки, семена не получены
               X TB 00-24C (кремовая гляциата, золотистые края, мандариновая бородка): две коробочки (20 и 20)

JUMP START (K. Keppel '02), красно-чёрный, мандариновая бородка
               X SDB 96-09A (чёрный, мандариновая бородка): две коробочки (11 и 7)
               X TB FIERY TEMPER (красный/чёрный, двухтонный, мандариновая бородка): две коробочки (14 и 18)

KAHUNA (M. Smith '02), коричневый, ярко-жёлтая бородка
               X SDB 99-09A (чёрный, мандариновая бородка): две попытки, семена не получены
               X TB GAME PLAN (дымчато-оранжевый, мандариновая бородка): одна коробочка (1)

LONDONDERRY (K. Keppel '96), льдисто-бледно-лиловый (6 семян в предыдущем тесте)
               X SDB QUARTZLIGHT (розовато-лиловый, синяя бородка): две попытки, семена не получены
               X TB (название не указано): две попытки, одна пустая коробочка (0)

MING (M. Smith '98) бледно-жёлтая гляциата
               X SDB 02-23Gp (бледно-персиковая гляциата): две коробочки (5 и 6)
               X TB 00-24C9C (кремовая гляциата, золотистые края, мандариновая бородка): две коробочки (8 и 7)

OBLIVION (M. Smith '03), почти чёрная люмината
               X SDB Кеппел 98-10В (тёмно-фиолетовая люмината): две коробочки (4 и 1)
               X TB 00-31A (с фиолетовым покрытием на жёлтом люмината): две коробочки (8 и 6)

PAISLEY (M. Smith '05), многоцветная люминатa
               X SDB DENALI (белый, синее жилкование в центре F.): одна коробочка (4)
               X TB 01-31B (фиолетовая на жёлтом люмината): три попытки, три коробочки (11, 11, 19)

PRISM (M. Smith '95), фиолетовая люмината/пликата
               X SDB Кеппел 98-10А (тёмно-фиолетовая люмината): две попытки, семена не получены
               X TB 00-28L (тёмно-фиолетовая на белом люмината): две коробочки (17 и 19)

RUBY SLIPPERS (K. Keppel '02), красный, мандариновая бородка
               X SDB 96-09A (чёрный, мандариновая бородка): две коробочки (5 и 6)
               X TB FIERY TEMPER (красный/чёрный, двухтонный, мандариновая бородка): две коробочки (6 и 26)

SAILOR (Smith '96), синяя на белом пликата
               X SDB 02-14B (лиловая пликата, мандариновая бородка): две коробочки (32 и 22)
               X TB STORM TRACK (темнейшая лиловая на белом пликата): одна коробочка (22)

STARWOMAN (M. Smith '98), тёмно-лиловая на белом пликата
               X SDB 02-15D (темнейшая лиловая на кремовом пликата): две коробочки (13 и 23)
               X TB STORM TRACK (темнейшая лиловая на белом пликата): две коробочки (12 и 18)

Сеянец 98-30S, фиолетовая на персиковом люмината
               X SDB DENALI (белый, синее жилкование в центре F.): две коробочки (4 и 8)
               X TB 01-31C (люмината с кремовыми S. и красными F.): две коробочки (13 и 30)

Сеянец 99-18А, бледно-лиловый, золотистая кайма, мандариновая бородка
               X SDB Блэк В279ВВ (тёмно-фиолетовый, более тёмное пятно на F.): две коробочки (30 и 18)
               X TB 00-24E (персиковая с фиолетовым покрытием на F. люмината): две коробочки (13 и 30)

Сеянец 99-26А, тёмно-красная на белом пликата, красная бородка
               Х SDB 00-12G (персиковые S., красная на белом пликата на F.): две коробочки (26 и 19)
               X TB LONELY HEARTS (розовая пликата, красная бородка): две коробочки (25 и 29)

Сеянец 00-22А, очень насыщенный жёлтый, жёлто-оранжевая бородка
               X SDB FIRE EATER (тёмно-оранжевый, красная бородка): одна коробочка (14)
               X TB GAME PLAN (дымчато-оранжевый, мандариновая бородка): одна коробочка (7)

    Теперь для читателя не секрет, что ирисы Интермедиа могут давать семена. Что же можно с помощью этого достичь? В случае направления гибридизации "вверх" или "вниз", они смогут послужить своего рода мостом. Например, они могут принести пятно I. pumila в группу Бордюрных–Высоких, как это было сделано с помощью сорта Бэрри Блайза ZING ME. Сеянец последнего, ZINGERADO, полученный Лоуэллом Боманком (Lowell Baumunk) в результате скрещивания с SILVERADO, завоевал приз как лучший Бордюрный ирис на конкурсе во Флоренции этой весной. Такие скрещивания должны способствовать появлению более элегантных цветков, желаемых в настоящее время для класса Бордюрных Бородатых, однако они могут и выбиваться за границы этого класса; и цветки, будучи более элегантными, могут не иметь ширины и гофрированности, свойственной старым BB – этим "укороченным" TB. Кэрол Лэнкоу предлагала решить эту задачу увеличением хромосомного числа с 46 до 47 – путём скрещивания IB x TB сеянцев снова с TB, что могло бы помочь привнести недостающие качества, если, конечно, при этом эти ирисы оставались бы в классе.
    Если в скрещиваниях используются Стандартные Карлики, то с помощью Интермедий они могут обогатиться новыми окрасками, свойственными Высоким и Бордюрным Бородатым ирисам. Открываются неисчерпаемые возможности для создания двухцветных новинок, как обычных, так и реверсивных, новых оттенков люминат и ещё многого другого – слишком многочисленного, чтобы быть здесь перечисленным. Часто первое поколение ("42-шки") будет иметь цветки и листья, слишком большие для пропорций, принятых у SDB. Но эти IB x SDB гибриды, как правило, достаточно фертильны, чтобы иметь возможность получить второе поколение, используя снова SDB в качестве родителя, и решить таким образом имевшиеся проблемы. Моим наиболее интересным результатом в этой области был DENALI – с его люминатной родословной и синим антоциановым жилкованием. (Люминаты никогда не имеют тёмных жилок). Материнским ра-стением DENALI был сеянец второго поколения от IB x SDB скрещивания – от одного из "братьев" IB MING. При сравнении его потомков было выявлено, что именно он являлся носителем генов этих странных жилок.
    В эксперименте 1998 года мной был получен BB сеянец от STARWOMAN, 27 дюймов высотой, с 8 почками, гофрированный, с драматичным, почти чёрным на белом поле узором пликаты, который был окончательно отбракован этой весной из-за его отказа полностью раскрывать цветки. Конечно, я постараюсь прорастить подобные семена от STARWOMAN ещё раз. И если бы я специально собирала коллекцию хороших IB родителей, я бы обязательно включила в неё следующих: BOLD STROKE, синий с тёмно-синей бородкой и к тому же с фертильной пыльцой; DARK WATERS – за его темнейшее фиолетовое сочетание шелковистости и бархатистости; DELIRIUM, популярную люминату с золотистыми стандартами и фолами, покрытыми насыщенным пурпурно-лиловым и оттенёнными пушистой красной бородкой; лимонно-жёлтый MING – в качестве обязательной гляциаты; PROTOCOL, яркую жёлтую амену – в качестве родоначальника амен разнообразной новой окраски; PRISM, фиолетовую пликату/люминату замечательной округлой формы; SAILOR, чистую неглекту-пликату; и дополнительных родителей по результатам проращивания семян из сохранившихся коробочек.
    Для энергичного гибридизатора, который хотел бы получить множество коробочек (процент прорастания может доходить до 25) и который не требует мгновенного вознаграждения в первом же урожае семян, это – обширное поле для приложения сил. Работу лучше проводить на сформировавшихся растениях, образовавших достаточное количество цветоносов, – чтобы избежать получения слишком малого числа коробочек и низкого процента прорастания семян. Также необходимо проводить работу с дающими пыльцу IB, опыляя ими SDB, TB и, конечно, – другие IB. Для IB x IB скрещиваний можно предсказать получение наименьшего количества семян и самый низкий процент прорастания; но если выбранные родители оцениваются как хорошие представители класса IB, проблемы с получением потомства могут быть относительно уменьшены. В любом случае, открывающиеся возможности помогут по-новому оценить класс Интермедий и его перспективы. Этот класс ирисов всегда был наиболее любимым мною, своим цветением как бы заполняя пробел между цветением Стандартных Карликов и Высоких. Также IB ирисы являются самыми легкоуправляемыми растениями для любого сада, особенно – для маленького, где нельзя отдать много ценного пространства огромным кустам TB. Сейчас Интермедии добавляют целый новый пласт к всегда характеризовавшей их полезности, свойство, которое должно приносить дополнительное удовольствие и повод включать эти ирисы в любые ирисовые посадки. Остаётся лишь вопрос: "Что дальше?"
––––––––––
* IMB (Связующие Среднерослые Бородатые) в классификации РОИ (везде в данной статье).
** SMB (Стандартные Среднерослые Бородатые) в классификации РОИ (везде в данной статье).

(Переведено Е. Зайцевой из апрельского выпуска Бюллетеня AIS за 2005 год)

(Из Бюллетеня РОИ за 2006 год)

О посеве и ином

Борыс Правдывый (Украина)

    Многие из нас приходят к гибридизации и селекции уже не в юном возрасте, и тем желаннее для нас высокий темп в работе: дружная и обильная всхожесть семян в первую же весну, быстрое развитие сеянцев до цветения и их "немедленное" опыление для скорейшего получения следующего поколения. Многое из сказанного ниже, разумеется, не бесспорно. Предлагаю лишь попробовать это при подыскивании оптимального для себя варианта.
    Вначале я просто не знал, когда созревают семена ирисов. Приехав как-то на уча-сток в августе, обнаружил сухие, растрескавшиеся коробочки у ирисов-карликов и просыпавшиеся тёмные, сморщенные семена. Всё, что нашёл, собрал и осенью посеял, других рекомендаций о сроках посева в то время не имел. Всхожесть весной была удручающей: редкие сеянцы, и даже – не из всех коробочек. Очевидно, цели природы, запрограммировавшей определённое поведение семян, и гибридизатора – различны. Значит, что-то надо делать иначе.
    На следующий год мне повезло познакомиться с Ниной Афанасьевной Мирошниченко, многие сорта которой я знал и некоторые из них выращивал. Счастливый человек! Несколько десятилетий дарить своими сортами радость сотням людей – такую возможность жизнь предоставляет не каждому. Щедрая сердцем Нина Афанасьевна дала мне несколько советов, основным из которых было – не ждать растрескивания коробочек и полного созревания семян, раскрывать коробочки при изменении их цвета и семена тотчас же сеять в землю. Совет понял и принял сразу. В те годы азартно увлекался садоводством и уже читал в какой-то статье, что при посеве для будущих подвоев семена яблони следует брать светло-жёлтые, а не полностью созревшие тёмные. Не претендую на научную точность пересказа, помню лишь, что при полном созревании семян в них вырабатывается некий консервант, растягивающий всхожесть на многие годы. Друг, занимающийся розами, сказал о таком же правиле при посеве семян шиповников для будущих окулировок: брать семена из бурых плодов, а не из полностью созревших красных. О столь раннем сроке посева Нина Афанасьевна, как мне говорили, писала в каком-то цветоводческом журнале, жаль, если это прошло мимо внимания увлекающихся гибридизацией.
    Дела пошли на лад, всхожесть семян возросла приблизительно до 60% у ТВ и до 65% у SDB ирисов. На второй год всходит уже очень мало. Преждевременные всходы той же осенью бывают, но – в незначительном количестве и не каждый год. Чаще всего это лишь несколько сеянцев из 2-4 тысяч высеянных семян. Многие из преждевременных сеянцев погибают в первую же зиму, а некоторые из оставшихся развиваются в следующем сезоне хуже взошедших будущей весной. Печальна гибель даже нескольких сеянцев (особенно – из самых интересных коробочек), но эти потери несравнимы с преимуществом раннего посева по общей всхожести.
    "Рекордными" по всхожести были: у ТВ – 1998 год (68%), у SDB – 1997 год (74%). Почему не улучшились с годами эти "рекорды"? Значительно больше стал опылять, количество полученных коробочек возросло в последние годы до 130-150 у SDB и до 60-100 у ТВ. Соблюдать с точностью сроки сбора семян по многим причинам не всегда удаётся. Иногда оттягиваю съём коробочек ещё на несколько дней, иногда снятые коробочки "ждут своей очереди". Бывает, что уже выбранные из них семена лежат до посева по несколько дней, так как земля для них ещё не готова. Ведь в период массового созревания снимать приходится по несколько десятков коробочек в день. Создалось впечатление, что потеря даже нескольких "лишних" дней, не говоря уже о неделях, хотя бы чуть-чуть, но ухудшает будущую всхожесть.
    Красноречива худшей всхожестью статистика лет, в которые по стечению обстоятельств я вынужден был переносить посев на более поздние, осенние сроки. Даю выборочно примеры самых неудачных годов:
    1997 год. ТВ, посев в середине сентября, 17 коробочек, 447 семян. Первичная схема посева уже утеряна, но помню, что весной взошло мало. На следующий год – значительно больше, из некоторых коробочек – подавляющее большинство. Хорошо хоть так, но год для работы с этими сеянцами потерян. Кое-что взошло и на третий год, окончательный итог – 64%, неплохо.
    2002 год. SDB, посев в конце сентября, 50 коробочек, 1094 семечка. В первую весну взошло всего 109 сеянцев, из 25 коробочек не взошло вообще ни одного сеянца. На второй год взошло ещё 452 сеянца, на третий – ещё 15. Всего – менее 53 %, плохо!
    2002 год. ТВ, семена последних семи коробочек из значительного урожая после долгих колебаний (нужны ли?) высеял в октябре (216 штук). Взошло – 3, ну и ну! На следующий год – ещё 48. Очень плохой результат.
    Что происходит в семенах, в точности не знаю, но некие процессы, продолжаясь в коробочке, оставленной на цветоносе, а затем и – при хранении коробочки или извлечённых из неё семян, по-видимому, тотчас же прекращаются при своевременном помещении семян в землю. А почвенные условия – влажность, температура – из года в год различны, но влияют они, похоже, лишь на появление иногда преждевременных сеянцев. Хотелось бы прочесть на этот счёт на страницах Бюллетеня авторитетное мнение специалиста – физиолога растений, ведь тема очень важная.
    Повторюсь. При созревании коробочки меняют свой зелёный цвет. Некоторые желтеют, некоторые, светлея, становятся несколько белёсыми, на иных появляются бурые пятна. В коробочках с небольшим количеством семян при встряхивании семена гремят, из снятых и раскрываемых в это время коробочек семена высыпаются. По-видимому, они уже автономны в этот момент, а коробочки лишь играют роль хранилища. Семена ещё светлые, желтые, гладкие, блестящие, уже твёрдые. У незначительного количества сортов семена и при полном созревании жёлтые. Обычно же они становятся коричневыми, и это означает, что ранний срок посева уже упущен.
    Селекционеры, не знакомые со столь ранним посевом семян ирисов, могут опробовать его на своём участке без большого риска. Достаточно часто в результате опылений получаются многосеменные коробочки. Половину семян из них можно посеять рано, остальные – рядом – после хранения, в привычные для вас сроки. И хотя каждое семя уже несёт в себе будущую индивидуальность, сравнительные результаты всхожести уже в первую весну вы будете иметь.
    Анализируя результаты посевов при разных сроках, сделал для себя выводы: суммарное количество взошедших за несколько лет сеянцев осеннего посева уступает разовой всхожести в первую же весну от посева раннего (ведь сохранность в земле всех семян в течение нескольких лет не гарантирована); также нет потерянных для работы с этими сеянцами лет, сеянцы "первой весны" (при посевах любых сроков) развиваются активнее.
    Когда всхожесть стабилизировалась на вполне приемлемом уровне, решил хотя бы карлики не пикировать. И многовато их каждый год (а меньше не хочется), и сроки накладываются на очень важный период пересадки оставляемых из процветших и извлечения ненужных, и цветение высокорослых ещё не окончилось… Начал сеять сразу на постоянное место. Вначале – по схеме 5 х 5 см, на следующий год – 6 х 6 см. Оказалось, это никуда не годится. Мощно развивающиеся сеянцы в первый же год совершенно подавляют менее сильных соседей. Представьте сеянец (при варианте посадки 6 х 6 см), давший с апреля по октябрь 22 ростовые почки: центр, вокруг него 4 детки, у них внуки, у тех правнуки… Взошедшие одновременно с ним сеянцы не развивались. Перешел к схеме посева 7 х 7 см и 8 х 8 см, увеличив вдвое площадь питания. Это уже значительно лучше, сказал бы, удовлетворяет, сильнее и равномернее развиваются сеянцы, больше их зацветает двухлетками. Хотя карлики и "ворчат", что 10 х 10 см было бы лучше, но ещё в полтора раза большую "жилплощадь", увы, дать им не могу.
    Кому 8 х 8, а кому 7 х 7? Пытаюсь угадать, учитывая сильнорослость родителей и мечтательно-прогнозируемые параметры будущего цветения. Если опыление делал с узкой задачей – улучшить голубой, например, получить ярче и чище розовые, изменить цвет бородки, – то после каждого сезона цветения оставляться будут в, лучшем случае, только 2-3 из цветших сеянцев, а то и 1, если не наметилась работа между сестринскими сеянцами. Значит, в данном случае приемлем посев 7 х 7 см. Если же "сеть забрасывалась пошире" – выловить что-нибудь интересное для следующих поколений, – тогда выбирается вариант 8 х 8 см. Более интересный разброс качеств можно ожидать при работе с пликатами и, особенно, при скрещивании пликат с непликатами для привлечения каких-либо качеств и возврата к пликате во втором поколении (это увлекательно). При удаче из таких коробочек может быть оставлено больше сеянцев, если они подскажут неожиданные варианты.
    Что это дало, кроме экономии времени и сил на рассаживание? Грядки посева по схеме 8 х 8 см хватает сеянцам на несколько лет, но только – при условии обязательного удаления отбракованных из процветших (а таких – подавляющее большинство) и отсаживания при надобности (иногда частичного) некоторых из оставляемых. Лучше это делать сразу после цветения, не тревожа начинающийся рост корней молодых делёнок у оставляемых культиваров. Нестопроцентная всхожесть и увеличение жизненного пространства при удалении ненужных сеянцев позволяют остающимся на грядке сеянцам получать вполне допустимые условия для дальнейшего развития.
    Такой посев изменил в лучшую сторону сроки первого цветения. При достаточной влажности почвы в мае-июне первого года роста (всходы появляются в середине апреля) на следующий год зацветает до 40% сеянцев, и это имело место у меня при посевах уже двух урожаев семян. Катастрофой может обернуться год, в котором ранневесенние заморозки погубят цветение. Такое в моём саду произошло в 2002 году: уже в марте было почти лето, ирисы рано начали вегетацию, а в первой половине апреля – заморозки до –7^oС. Ни единого случая гнили в дальнейшем, но почти ничего не цвело, к середине мая уже можно было сосчитать несостоявшиеся цветоносы… Без цветения ирисики бурно пошли в рост, и грядка однолеток превратилась в "теснотищу".
    А самым счастливым оказался посев 2003 года. Сроки посева были ранними, с запаздыванием по части созревания коробочек не более чем на 10 дней. Всхожесть составила 63%, росло 1569 сеянцев. Влажность почвы всю весну и начало лета 2004 года была хорошая, и в 2005 году зацвело 819 двухлеток (52% сеянцев) – о таком лишь мечталось. Интересных было немало. И хотя лишь некоторые из них после последующих просмотров, вероятно, зарегистрирую, по разным мотивам дальнейшей работы с сеянцами оставил ещё на какое-то время на местах 74 штуки, а также 2 пересадил, им было тесновато развиваться дальше. Грядка сильно опустела, значительно улучшились условия произрастания оставшихся сеянцев.
    Вероятно, рассаживание взошедших сеянцев с большими расстояниями между ними давало бы ещё лучший результат. Сеянцы в таком случае будут мощнее развиваться, дружнее подходить к первому цветению. Темп работы с ними ещё возрос бы, но при таком количестве сеянцев и ограниченности посадочных площадей мне это непосильно. Пока удовлетворяюсь описанным вариантом, втайне мечтая о ещё большем количестве коробочек и ещё большем изобилии цветущего материала. Кроме однолеток остаются же ещё и некоторые сеянцы из посевов предыдущих лет, а это ещё по 5-20 цветоносов. Такое "зрелище-пиршество" ни с чем не сравнимо, завораживает. Навсегда.

(Из Бюллетеня РОИ за 2006 год)

О сроках посадки бородатых ирисов

Виктор Резепов

(Из Бюллетеня РОИ за 2006 год)

Вверх

Из своего опыта

Виктор Шолупов (Краснодарский край)

(Из Бюллетеня РОИ за 1994 год)

Вверх

Уроки последних лет

Ю. Пирогов

    Средняя полоса Европейской части России всегда считалась зоной рискованного земледелия, и последняя пара лет подтвердила это в полной мере. Обилие осенних осадков и экстремально низкие зимние температуры, не слишком опасные для ирисов по отдельности, сошлись вместе в 2002 году, приведя к значительным выпадам в коллекциях высоких бородатых ирисов. Удивительно при этом то, что повреждения растений были совершенно не похожи на привычные нам, а многие ирисы к тому же прекрасно процвели в 2003 году.
    Каковы же обычные проблемы ирисов в условиях средней полосы и причины их порождающие? Главная, на наш взгляд, это - короткий вегетационный период с излишней влажностью во второй его половине. Многие сорта ирисов не успевают до наступления осенних заморозков закончить вегетационный цикл и уходят в зиму не вызревшими, продолжающими свой рост. Признаком того, что побег ириса закончил свой годовой цикл развития, является прекращение роста центральных листьев в веере и расхождение в стороны старых листьев - фаза "ножниц" по Г.И. Родионенко. Приглядитесь к своим ирисам осенью: многие ли из них в сентябре вступили в фазу "ножниц"? Обычно нет. Поэтому наиболее часто встречающимся зимним поражением оказывается подмерзание цветочной почки, продолжающей свой рост, а вслед за ней и – верхушки корневища.
    Совершенно другая картина наблюдалась весной 2003 года. У себя в саду я обнаружил крайне мало корневищ с замерзшей цветочной почкой. Практически во всех случаях, если корневище внешне было здорово, целой была и цветочная почка, не говоря уже о том, что не было ни одной подмерзшей "спинки" корневищ. Все эти почки весной благополучно тронулись в рост, но, к сожалению, через некоторое время значительное число их прекратило развитие и засохло. Проверка показала, что у них зимой замерзли и отмерли корни вместе с нижней частью корневищ. Таких повреждений я не встречал никогда ранее! Объяснение этому факту находится только одно: жаркое и сухое лето 2002 года было настолько благоприятно для бородатых ирисов, что большинство корневищ вызрело в полной мере и продемонстрировало высокую морозостойкость зрелых цветочных почек. В этом случае наиболее уязвимыми органами растения для почти что 30-градусных морозов оказались корни. Какой же вывод можно сделать из вышеизложенного? Для успешной зимовки цветочных почек агротехнические приемы должны быть таковы, чтобы, во-первых, дать ирисам летом как можно больше тепла и, во-вторых, во-время остановить рост побегов. Последнее является далеко не простой задачей, главным средством решения которой оказывается ограничение в азотном питании и во влаге, доступной растению. (То есть, это - агротехнические приемы, прямо противоположные тем, которые используются для получения повторного цветения у ремонтантных ирисов).
    Вернёмся к весне 2003 года. Основные потери ирисов были связаны, однако, не с подмерзанием корней, проявление которого было описано выше. Уже сразу после схода снега стало ясно, что значительное число корневищ погибло уже зимой, и под их твердой "скорлупой" оказывается серая жижа. Причем в моем саду наблюдалась явная зависимость количества таких погибших корневищ от наличия зимнего укрытия: на тех грядах, где осенью был набросан лёгкий слой лапника, ирисов, погибших таким образом, почти не было. Какую положительную роль мог нести небольшой слой лапника? От мороза он, конечно, не защитил, но создал воздушную прослойку между промерзшей почвой и упавшим впоследствии на неё снегом.
    Вспомним, как развивались события под Москвой в декабре 2002 года. Выпавший в ноябре снег был смыт потеплением и обильными дождями, насытившими землю влагой. Ударивший непосредственно вслед за этим мороз, достигавший в некоторых местах -30 градусов, заморозил эту влагу, не дав почве сколько-нибудь просохнуть. Выпавший через некоторое время снег законсервировал эту глыбу льда на несколько месяцев. Таким образом, ирисы находились более 4-х месяцев во льду без доступа воздуха. И это оказалось для многих смертельным. Похожая картина наблюдалась и южнее. Например, в Киеве, хотя и не было таких низких температур в декабре, последующие оттепели растапливали выпавший снег, и промерзшая земля покрылась толстым слоем льда, препятствовавшим дыханию растений, что привело к потерям ещё более существенным, чем под Москвой. Относительно лучшая ситуация наблюдалась лишь на участках с выраженным рельефом, где не было застоя талых вод. Таким образом, зиму 2002/03 года вполне можно сравнить с 4-х месячным затоплением, хоть и при отрицательной температуре. Вывод о важности наличия воздуха для успешной зимовки ирисов напрашивается сам собой. И это оказывается важным не только для холодных мест, таких как наше, но и для более теплых, с неустойчивым снежным покровом и частой сменой заморозков и оттепелей. Подтверждение этому тезису я нашел в статье Теда Уайта об использовании полиэфирного нетканого материала для зимнего укрытия ирисов, опубликованной во втором номере Бюллетеня AIS за 2000 год. Автор, живущий в штате Мэн, нёс значительные зимние потери ирисов до тех пор, пока не стал использовать нетканый материал типа Лутрасила или Спанбонда, и положительный эффект связывал именно с сохранением воздушной прослойки под нетканым материалом, препятствующим образованию ледяной корки вокруг корневищ ирисов.
    Ничего нового в вышеизложенном, в принципе, нет. Преимущества суховоздушного укрытия ирисов и необходимость выбора места с максимумом солнца и с хорошим дренажом известны давно, и суровая зима лишь подтвердила актуальность этих агротехнических приёмов. Но напомнить об этом всё же стоит, потому что некоторые ирисоводы упорно продолжают сажать ирисы на плохо дренированных глинистых участках, неся при этом совершенно неоправданные потери.
    Прошедший 2004 год оказался, пожалуй, не менее сложным, чем предыдущий, и дал ирисоводам новый урок. Мягкая зима 2003/04 года сулила хорошее цветение, но суровые апрельские и майские заморозки внесли свои коррективы, показав, какие из новых сортов устойчивы, а какие - нет. Приведу здесь небольшой перечень сортов, выглядевших наилучшим образом после весенних перипетий:

AMERICAN CLASSIC (Schreiner '96)
BALANCING ACT (T.Johnson '03)
BRASILIAN HOLIDAY (Schreine r'97)
CHINOOK WINDS (T.Johnson '03)
CONFIDANTE (Keppel '00)
DAUGHTER OF STARS (Spoon '01)
DETROIT CITY (Roberts '01)
DON'T TOUCH (Black '03)
FANCY STUFF (Brown '01)
FIERY TEMPER (Keppel '01)
JAZZED UP (Schreiner '94)
LEMON CHESS (Moores '96)
MIDNIGHT MOONLIGHT (Baumunk '00)
MY HEROINE (Baldwin '97)
PASSING CLOUDS (Hager '01)
POND LILY (E. Jones '95)
PROSPEROUS VOYAGE (Hager '97)
SIERRA GRANDE (Schreiner '92)
VIENNA WALTZ (Keppel '00)

    Лето 2004 года добавило новые проблемы. На удивление регулярные дожди в течение более чем полутора месяцев стали испытанием для ирисоводов. Самой большой проблемой этого лета стала мягкая гниль (бактериоз), и в борьбе с этой напастью стало ясно, насколько важно правильно подготовить место под посадку бородатых ирисов.
    В своём саду в 2003 году я отказался от посадок ирисов на ровной поверхности, как поступал в течение многих лет ранее, и стал готовить гряды, поднятые примерно на 10 см. Причем одна из гряд была сделана с деревянной отбортовкой, чуть шире других и несколько затенена в утренние и вечерние часы. Указанных факторов оказалось достаточно, чтобы почва на этой гряде не успевала просыхать в короткие солнечные промежутки между дождями, тогда как прочие гряды проветривались лучше. Результат был закономерным. Значительная часть высоких бородатых ирисов на этой гряде оказалась поражена бактериозом, тогда как на прочих грядах наблюдались лишь отдельные случаи заболевания. Вывод очевиден: лучше правильно посадить, чем потом бороться с болезнью.

(Из Бюллетеня РОИ за 2005 год)

Вверх

О таксономической структуре Iris pseudacorus s. I. (Iridaceae)

Георгий Родионенко (Санкт-Петербург)

(Из Бюллетеня РОИ за 2004 год)